Macromicetos asociados con Carya illinoinensis en La Comarca Lagunera, México
DOI:
https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2023.94.4074Palabras clave:
Agroecosistemas, Diversidad de hongos, Candolleomyces, Tuber, Nogal pecaneroResumen
Los agroecosistemas, como los cultivos de Carya illinoinensis (nogal pecanero), representan una actividad
económica importante y de constante crecimiento en La Comarca Lagunera, México. La mayor parte de los
macromicetos que se asocian con el nogal pecanero se distribuyen en los primeros horizontes del suelo y la rizosfera de las plantas. Para recolectar los macromicetos asociados al nogal se realizaron recorridos 2 veces por semana, de mayo a octubre de 2018, cubriendo en total 25 ha de una huerta en La Comarca Lagunera, México. A los hongos recolectados se les secuenció la región ITS del ADN ribosomal para corroborar su identificación taxonómica por
medio de análisis filogenéticos de máxima verosimilitud y bayesianos. Se encontraron 5 taxones asociados al nogal
pecanero, 4 identificados a nivel de especie (Agaricus deserticola, Candolleomyces luteopallidus, Tuber caryophilum y Scleroderma cepa s.l.) y una especie potencialmente nueva (Candolleomyces sp.). De éstos, C. luteopallidus se registra
por primera vez en México. Se discute la importancia de la diversidad de los hongos en este sistema agroforestal ya
que los hongos saprobios descomponen la materia orgánica y los ectomicorrízicos transfieren macro y micronutrientes
esenciales para el crecimiento y productividad del nogal.
Citas
Al-Habib, M. N., Holliday, J. y Tura, D. (2014). The pale brittle stem mushroom, Psathyrella candolleana (higher Basidiomycetes): an indigenous medicinal mushroom new to Iraq. International Journal of Medicinal Mushrooms, 16, 617–622. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushrooms.v16.i6.110
Altschul, S. F., Gish, W., Miller, W., Myers, E. W. y Lipman, D. J. (1990). Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology, 215, 403–410.
Benucci, G. M. N., Bonito, G., Falini, L. B. y Bencivenga, M. (2012a). Mycorrhization of Pecan trees (Carya illinoinensis) with commercial truffle species: Tuber aestivum Vittad. and Tuber borchii Vittad. Mycorrhiza, 22, 383–392. https://doi.org/10.1007/s00572-011-0413-z
Benucci, G. M. N., Csorbai, A. G., Falini, L. B., Bencivenga, M., Di Massimo, G. y Donnini, D. (2012b). Mycorrhization of Quercus robur L., Quercus cerris L. and Corylus avellana L. seedlings with Tuber macrosporum Vittad. Mycorrhiza, 22, 639–646. https://doi.org/10.1007/s00572-012-0441-3
Bickford, D., Lohman, D. J., Sodhi, N. S., Meier, R., Winker, K. y Das, I. (2007). Cryptic species as a window on diversity and conservation. Trends in Ecology & Evolution, 22, 148–155. https://doi.org/10.1016/j.tree.2006.11.004
Bonito, G., Brenneman, T. y Vilgalys, R. (2011). Ectomycorrhizal fungal diversity in orchards of cultivated pecan (Carya illinoinensis; Juglandaceae). Mycorrhiza, 21, 601–612. https://doi.org/10.1007/s00572-011-0368-0
Bonito, G., Smith, M. E., Nowak, M., Healy, R. A., Guevara, G., Cázares, E. et al. (2013). Historical biogeography and diversification of truffles in the Tuberaceae and their newly identified southern hemisphere sister lineage. Plos One, 8, e52765. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0052765
Casales, F. G., Van der Watt, E. y Coetzer, G. M. (2018). Propagation of pecan (Carya illinoinensis): a review. African Journal of Biotechnology, 17, 586–605. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0052765
Conabio. (2014). Catálogos de autoridades taxonómicas (CAT) Biótica 5.0. Ciudad de México: Conabio. Recuperado el 8 noviembre, 2020 de: http://www.conabio.gob.mx/biotica5/documents/CursoEnero2014/SCATBiotica50_enero2014.pdf
Córdova-Chávez, O., Medel, R., Mata, G., Castillo, R. y Vázquez-Ramírez, J. (2014). Evaluación de hongos ectomicorrícicos del grupo de los basidiomicetos en la zona del Cofre de Perote, Veracruz. Madera y Bosques, 20, 97–106.
Cruz, R., Carvajal, L. y Pérez, S. (2017). Identificación de Scleroderma citrinum Pers en una plantación de almendros de la ciudad de Villa Alemana, Chile. Boletín Micológico, 32, 34–38. https://doi.org/10.22370/bolmicol.2017.32.2.1062
Edgar, R. C. (2004). MUSCLE: a multiple sequence alignment method with reduced time and space complexity. BMC Bioinformatics, 5, 1–19.
Ge, Z. W., Brenneman, T., Bonito, G. y Smith, M. E. (2017). Soil pH and mineral nutrients strongly influence truffles and other ectomycorrhizal fungi associated with commercial pecans (Carya illinoinensis). Plant and Soil, 418, 493–505. https://doi.org/10.1007/s11104-017-3312-z
González-Chávez, B. P., Ojeda-Barrios, D. L., Hernández-Rodríguez, O. A., Martínez-Téllez, J. y Núñez-Barrios, A. (2009). Ectomicorrizas en nogal pecanero. Tecnociencia Chihuahua, 3, 138–146.
González-Chávez, M. D., Torres-Cruz, T. J., Sánchez, S. A., Carrillo-González, R., Carrillo-López, L. M. y Porras-Alfaro, A. (2018). Microscopic characterization of orchid mycorrhizal fungi: Scleroderma as a putative novel orchid mycorrhizal fungus of Vanilla in different crop systems. Mycorrhiza, 28, 147–157. https://doi.org/10.1007/s00572-017-0808-6
Grupe, A. C., Sulzbacher, M. A., Grebenc, T., Healy, R., Bonito, G. y Smith, M. E. (2018). Tuber brennemanii and Tuber floridanum: Two new Tuber species are among the most commonly detected ectomycorrhizal taxa within commercial pecan (Carya illinoinensis) orchards. Mycologia, 110, 780–790. https://doi.org/10.1080/00275514.2018.1490121
Guevara, G., Bonito, G. y Cázares, E. (2013). Revisión del género Tuber (Tuberaceae: Pezizales) de México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 84, S39–S49. https://doi.org/10.7550/rmb.31981.
Gurgel, F. E., Silva, B. y Baseia, I. G. (2008). New records of Scleroderma from northeastern Brazil. Mycotaxon, 105, 399–405.
Guzmán, G., Cortés-Pérez, A., Guzmán-Dávalos, L., Ramírez-Guillén, F. y Sánchez-Jácome, M. (2013). An emendation of Scleroderma, new records, and review of the known species in Mexico. Revista Mexicana de Biodiversidad, 84, S173–S191 https://doi.org/10.7550/rmb.31979
Guzmán, G., Montoya-Bello, L. y Bandala-Muñoz, V. M. (1988). A new species of Psathyrella (Agaricales, Coprinaceae) from Mexico with discussions on the known species. Brittonia, 40, 229–234.
Guzmán, G., Ramírez-Guillén, F., Miller, O. K. Jr., Lodge, D. J. y Baroni, T. J. (2004). Scleroderma stellatum versus Scleroderma bermudense: the status of Scleroderma echinatum and the first record of Veligaster nitidum from the Virgin Islands. Mycologia, 96, 1370–1379. https://doi.org/10.1080/15572536.2005.11832886
Harding, P. R. Jr. (1957). Notes on Longula texensis var. major. Mycologia, 49, 273–276. https://doi.org/10.1080/00275514.1957.12024640
Healy, R., Bonito, G. M. y Smith, M. E. (2016). A brief overview of the systematics, taxonomy, and ecology of the Tuber rufum clade. En A. ¬Zambonelli, M. ¬Iotti y C. -Murat (Eds.), True truffle (Tuber spp.) in the World (pp. 125–136). Suecia: Springer. https://doi.org/10.1007/978-3-319-31436-5_8
Huelsenbeck, J. P. y Ronquist F. (2001) MRBAYES: Bayesian inference of phylogenetic trees. Bioinformatics, 17, 754–755.
Index Fungorum (2021). Index Fungorum. Recuperado el 07 octubre, 2020 de: http://www.indexfungorum.org./Names/Names.asp
INIFAP (Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias). (2002). Tecnología de producción en nogal pecanero. Ciudad de México: CELALA-CIRNOC-INIFAP.
Kerrigan, R. W. (2016). Agaricus of North America. Memoirs of the New York Botanical Garden, Volume 114. Nueva York: The New York Botanical Garden Press.
Kirk, P. M., Cannon, P. F., Minter, D. W. y Stalpers, J. A. (2008). Dictionary of the Fungi, 10th edition. Wallingford: CABI.
Kumla, J., Suwannarach, N., Bussaban, B. y Lumyong, S. (2013). Scleroderma suthepense, a new ectomycorrhizal fungus from Thailand. Mycotaxon, 123, 1–7. http://doi.org/10.5248/123.1
Marx, D. H. (1971). Root inhabiting mycorrhizal fungi benefit growth of trees. En Proceedings of the 5th Ann. West. Irri. Pecan Grow. Ass. Conf. (pp. 14–18). New Mexico: New Mexico State University.
Moreno, G., Lizárraga, M., Esqueda, M. y Coronado, M. L. (2010). Contribution to the study of gasteroid and secotioid fungi of Chihuahua, Mexico. Mycotaxon, 112, 291–315.
Mrak, T., Kühdorf, K., Grebenc, T., Štraus, I., Münzenberger, B. y Kraigher, H. (2017). Scleroderma areolatum ectomycorrhiza on Fagus sylvatica L. Mycorrhiza, 27, 283–293. https://doi.org/10.1007/s00572-016-0748-6
Munsell, A. H. (1954) Munsell soil color charts. Baltimore: Munsell Color Company.
Muñoz, G. y Caballero, A. (2012). Contribución al conocimiento del género Psathyrella en la Península Ibérica (I). Boletin Micológico FAMCAL, 7, 37–74.
Nouhra, E. R., Hernández Caffot, M. L., Pastor, N. y Crespo, E. M. (2012). The species of Scleroderma from Argentina, including a new species from the Nothofagus forest. Mycologia, 104, 488–495. https://doi.org/10.3852/11-082
Palestina-Villa, E. N., Parra-Sánchez, L. A., Villegas, M., Garibay-Orijel, R. y Medel-Ortiz, R. (2020). The known species of Agaricus (Agaricales, Agaricaceae) in Mexico, an updated and nomenclatural review. Scientia Fungorum, 50, e1269. https://doi.org/10.33885/sf.2020.50.1269
Paz, A., González, M. y Crawford, A. J. (2011). Códigos de barras de la vida: introducción y perspectiva. Acta Biológica Colombiana, 16, 161–175.
Phosri, C., Martín, M. P., Watling, R., Jeppson, M. y Sihanonth, P. (2009). Molecular phylogeny and re-assessment of some Scleroderma sp. (Gasteromycetes). Anales del Jardín Botánico de Madrid, 66, 83–91. http://dx.doi.org/10.3989/ajbm.2199
Posada. D. (2008). jModelTest: Phylogenetic model averaging. Molecular Biology and Evolution, 25, 1253–1256. https://doi.org/10.1093/molbev/msn083
Quiñónez, M., Garza, F., Mendoza, J. R., García, J., Sáenz, J. y Bolaños, H. (1999). Guía de hongos de la región de bosque Modelo Chihuahua. Chihuahua: Universidad Autónoma de Chihuahua/ Universidad Autónoma de Nuevo León/ Instituto Tecnológico de Ciudad Victoria/ Bosque Modelo Chihuahua, A.C.
Ramírez, L. R. (2013). Los basidiomicetos: una herramienta biotecnológica promisoria con impacto en la agricultura. Fitosanidad, 17, 49–55.
Rivero, S. T., Moorillón, V. N. y Borunda, E. O. (2009). Growth, yield, and nutrient status of pecans fertilized with biosolids and inoculated with rizosphere fungi. Bioresource technology, 100, 1992–1998. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2007.12.078
Sagaram, M., Lombardini, L. y Grauke, L. J. (2011). Variation in anatomical characteristics in leaves of pecan seedstocks from Mexico and the United States. Journal of the American Society for Horticultural Science, 136, 103–108. https://doi.org/10.21273/JASHS.1
Sánchez-Ledesma, J. A., Guevara-Guerrero, G., Garibay-Orijel, R., Ángeles-Argáiz, R., Ávila-Rodríguez, V., Arreola-Ávila, J. G. et al. (2022). Tuber caryophilum, a new truffle species growing in Carya illinoinensis orchards. Revista Mexicana de Biodiversidad, 93, e934893. https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2022.93.4893
Sambrook, J., Fritsch, E. y Maniatis, T. (1989). Molecular cloning: a laboratory guide. Nueva York: Cold Spring Harbor Laboratories Press.
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera). (2021). Avances de siembras y cosechas 2021. Recuperado el 26 abril, 2022 de: http://infosiap.siap.gob.mx/gobmx/datosAbiertos.php
Smith, A. H. (1972). The North American species of Psathyrella. Memoirs of the New York Botanical Garden, 24, 1–633.
Stamatakis A. (2006). RAxML-VI-HPC: Maximum likelihood-based phylogenetic analyses with thousands of taxa and mixed models. Bioinformatics, 22, 2688–2690. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl446
Taber, R. A., 1984. Mycorrhyzal fungi associated with pecans. En 18th Western Pecan Conference Proceedings (pp. 135–136). New Mexico: CES-New Mexico State University.
Tarango, R. S. 2004. Micorrizas en nogal pecanero y pistachero. Folleto Técnico No. 16 del INIFAP-Delicias. Chihuahua: Centro de investigaciones regionales norte-centro campo experimental Delicias.
Tovar, A. R., Cásarez, B. X. y Valdés, M. (2004). Ecología molecular de los hongos ectomicorrízicos. Revista Fitotecnia Mexicana, 27, 267–278.
Villasante, J., Pérez-Carrillo, E., Heredia-Olea, E., Metón, I. y Almajano, M. P. (2019). In vitro antioxidant activity optimization of nut shell (Carya illinoinensis) by extrusion using response surface methods. Biomolecules, 9, 883. https://doi.org/10.3390/biom9120883
Vrain, T. C., Wakarchuk, D. A., Levesque, A. C. y Hamilton, R. I. (1992). Intraspecific rDNA restriction fragment length polymorphism in the Xiphinema americanum group. Fundamental and applied Nematology, 15, 563–573.
Wächter, D. y Melzer, A. (2020). Proposal for a subdivision of the family Psathyrellaceae based on a taxon-rich phylogenetic analysis with iterative multigene guide tree. Mycological Progress, 19, 1151–1265. https://doi.org/10.1007/s11557-020-01606-3
Yun, W. y Hall, I. R. (2004). Edible ectomycorrhizal mushrooms: challenges and achievements. Canadian Journal of Botany, 82, 1063–1073.
