Pérdida de agua por evaporación en Gastrotheca marsupiata y Pleurodema cinereum en un valle seco altoandino
DOI:
https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2021.92.3218Palabras clave:
Anfibios, Ecofisiología, Evaporación cutánea, Modelos de agar, MicrohábitatResumen
Los anfibios conforman uno de los grupos más diversos y exitosos del planeta, pero no lograron independizarse por completo de los cuerpos de agua y están sujetos a una constante pérdida de agua por evaporación, que depende de factores determinados por el hábitat que ocupan. Gastrotheca marsupiata y Pleurodema cinereum son anfibios
anuros que comparten el mismo tipo de hábitat en el Valle de La Paz. El objetivo del presente trabajo fue comparar la pérdida de agua por evaporación entre las 2 especies, tanto en condiciones de laboratorio utilizando individuos vivos, así como en diferentes microhábitats naturales utilizando modelos de agar. Los resultados muestran que los
individuos de G. marsupiata pierden más agua que los de P. cinereum, tanto en condiciones de laboratorio como los modelos simulados en los diferentes microhábitats. Nuestros resultados sugieren que la aparente disminución de las poblaciones de G. marsupiata en el Valle de La Paz puede estar influenciada por la pérdida de agua por evaporación, ya que independientemente del microhábitat y la hora del día, G. marsupiata pierde más agua que P. cinereum.
Citas
Anderson, E. P., Marengo, J., Villalba, R., Halloy, S., Young, B., Cordero, D. et al. (2011). Consequences of climate change for ecosystems and ecosystem services in the tropical Andes. En S. K. Herzog, R. Martínez, P. M. Jørgensen y H. Tiessen (Eds.), Climate change and biodiversity in the tropical Andes (pp. 1–18). Inter-American Institute for Global Change Research (IAI)/ Scientific Committee on Problems of the Environment (SCOPE).
Aparicio, M. (2014). Cambio climático agua y salud en Ancoraimes y Batallas. Instituto Boliviano de Biología de Altura (IBBA). La Paz: Facultad de Medicina, UMSA.
Aparicio, J., Ocampo, M., Aguilar, A. J., Pacheco, L., Miranda, B., Ríos, N. et al. (2015). Anfibios del Valle de La Paz. En M. I. Moya, R. I. Meneses y J. Sarmiento (Eds.), Historia natural de un valle en los Andes: La Paz, Bolivia (pp. 514–516). La Paz: Museo Nacional de Historia Nacional.
Beck, S. G., García, E., Thompson, N., Meneses, R. I., Zenteno, F., López, R. et al. (2015). Paisajes, eco-regiones y vegetación. En M. I. Moya, R. I. Meneses y J. Sarmiento (Eds.), Historia natural de un valle en los Andes: La Paz, Bolivia, 2ª Ed. (pp. 130–137). La Paz: Museo Nacional de Historia Nacional.
Bentley, P. J. y Yorio, T. (1976). The passive permeability of the skin of anuran amphibia: a comparison of frogs (Rana pipiens) and toads (Bufo marinus). The Journal of Physiology, 261, 603–615. https://doi.org/10.1113/jphysiol.1976.sp011576
Beuchat, C., Pough, F. y Stewart, M. (1984). Response to simultaneous dehydration and thermal stress in three species of Puerto Rican frogs. Journal of Comparative Physiology B, 154, 579–585. https://doi.org/10.1007/BF00684411
Blaylock, L., Ruibal, R. y Platt-Aloia, K. (1976). Skin structure and wiping behavior of Phyllomedusine Frogs, Copeia, 2, 283–295. https://doi.org/10.2307/1443948
Burggren, W. W. y Warburton, S. (2007). Amphibians as animal models for laboratory research in physiology. ILAR Journal, 48, 260–269. https://doi.org/10.1093/ilar.48.3.260
Buttemer, W. (1990). Effect of temperature on evaporative water loss of the Australian tree frogs Litoria caerulea and Litoria chloris. Physiological Zoology, 63, 1043–1057.
Buttemer, W. A. y Thomas, C. (2003). Influence of temperature on evaporative water loss and cutaneous resistance to water vapour diffusion in the orange-thighed frog (Litoria xanthomera). Australian Journal of Zoology, 21, 111–118. https://doi.org/10.1071/ZO02057
Carey, C. y Alexander, M.A. (2003). Climate change and amphibian declines: is there a link? Diversity and Distributions, 9, 111–121. https://doi.org/10.1046/j.1472-4642.2003.00011.x
Cartledge, V. A., Withers, P. C., McMaster, K. A., Thompson, G. G. y Bradshaw, S. D. (2006). Water balance of field-excavated aestivating Australian desert frogs, the cocoon-forming Neobatrachus aquilonius and the non-cocooning Notaden nichollsi (Amphibia: Myobatrachidae). Journal of Experimental Biology, 209, 3309–3321. https://doi.org/10.1242/jeb.02393
Catenazzi, A., Lehr, E. y Vredenburg, V. T. (2014). Thermal physiology, disease, and amphibian declines on the eastern slopes of the Andes. Conservation Biology, 28, 509–517 https://doi.org/10.1111/cobi.12194
Cayuela, H., Arsovski, D., Bonnaire, E., Duguet, R., Joly, P. y Besnard, A. (2016). The impact of severe drought on survival, fecundity and population persistence in an endangered amphibian. Ecosphere, 7, 01246. https://doi.org/10.1002/ecs2.1246
Daneri, M.F. (2010). Aprendizaje especial en el anfibio Bufo arenarum. Estrategias, fenómenos y bases neurales (Tesis doctoral). Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Buenos Aires.
Duarte, H., Tejedo, M., Katzenberger, M., Marangoni, F., Baldo, D., Beltrán, J. et al. (2012). Can amphibians take the heat? Vulnerability to climate warming in subtropical and temperate larval amphibian communities. Global Change Biology, 18, 412–421. https://doi.org/10.1111/j.1365-2486.2011.02518.x
Feder, M. E. y Londos, P. L. (1984). Hydric constraints upon foraging in a terrestrial salamander, Desmognathus ochrophaeus (Amphibia:Plethodontidae). Oecologia, 64, 413–418. https://doi.org/10.1007/BF00379141
Garner, T. W., Perkins, M. W., Govindarajulu, P., Seglie, D., Walker, S., Cunningham, A. A. et al. (2006). The emerging amphibian pathogen Batrachochytrium dendrobatidis globally infects introduced populations of the North American bullfrog, Rana catesbeiana. Biology Letters, 2, 455–459. https://doi.org/10.1098/rsbl.2006.0494
Gibbons, J. W., Scott, D. E., Ryan, T. J., Buhlmann, K. A., Tuberville, T. D., Metts, B. S. et al. (2000). The global decline of reptiles, Déjà Vu amphibians: reptile species are declining on a global scale. Six significant threats to reptile populations are habitat loss and degradation, introduced invasive species, environmental pollution, disease, unsustainable use, and global climate change. AIBS Bulletin, 50, 653–666. https://doi.org/10.1641/0006-3568(2000)050[0653:TGDORD]2.0.CO;2
Köhler, A., Sadowska, J., Olszewska, J., Trzeciak, P., Berger-Tal, O. y Tracy, C. (2011). Staying warm or moist? Operative temperature and thermal preferences of common frogs (Rana temporaria), and effects on locomotion. Herpetological Journal, 21, 17–26.
Liu, J. N. y Ping-Chun, L. (2012). Cutaneous resistance to evaporative water loss in Taiwanese arboreal Rhacophorid frogs. Zoological Studies, 51, 988–995.
Muzio, R. N., Creydt, V. P., Iurman, M., Rinaldi, M. A., Sirani, B. y Papini, M. R. (2011). Incentive or habit learning in amphibians? Plos One, 6, e25798. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0025798
Navas, C. A. (1997). Thermal extremes at high elevations in the Andes: physiological ecology of frogs. Journal of Thermal Biology, 22, 467–477. https://doi.org/10.1016/S0306-4565(97)00065-X
Navas, C. A. (1999). Biodiversidad de anfibios y reptiles en el páramo: una visión ecofisiológica. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, 23, 465–474.
Navas, C. A. (2003). Anfibios y lagartos de alta montaña: ecofisiología evolutiva y límites altitudinales. En F. Bozinovis (Ed.), Fisiología ecológica & evolutiva (pp. 249–271). Santiago de Chile: Ediciones Universidad Católica de Chile.
Navas, C. A. y Araujo, C. (2000). The use of agar models to study amphibian thermal ecology. Journal of Herpetology, 34, 330–334. https://doi.org/10.2307/1565438
Navas, C. A., Carvajalino-Fernández, J. M., Saboyá-Acosta, L. P., Rueda-Solano, L. A. y Carvajalino-Fernández, M. A. (2013). The body temperature of active amphibians along a tropical elevation gradient: patterns of mean and variance and inference from environmental data. Functional Ecology, 27, 1145–1154. https://doi.org/10.1111/1365-2435.12106
Parsons, R. H. y Mobin, F. (1991). Water flow across the pectoral and ventral pelvic patch in Rana catesbeiana. Physiological Zoology, 64, 812–822.
Pough, F. H., Taigen, T. L., Stewart, M. M, y Brussard, P. F. (1983). Behavioral modification of evaporative water loss by a Puerto Rican frog. Ecology, 64, 244–252. https://doi.org/10.2307/1937072
Prates, I. y Navas, C.A. (2009). Cutaneous resistance to evaporative water loss in Brazilian Rhinella (Anura: Bufonidae). Contrasting Environments, 2009, 618–622. https://doi.org/10.1643/CP-08-128
Rohr, J. R., y Madison, D. M. (2003). Dryness increases predation risk in efts: support for an amphibian decline hypothesis. Oecologia, 135, 657–664. https://doi.org/10.1007/s00442-
-1206-7
Romero, P. (2013). Requerimientos fisiológicos y microambien-
tales de dos especies de anfibios (Scinax ruber e Hyloxalus yasuni) del bosque tropical de Yasuní y sus implicaciones ante el cambio climático (Tesis). Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad Católica del Ecuador. Quito. http://repositorio.puce.edu.ec/handle/22000/5726
Schmid, W. D. (1965). Some aspects of the water economies of nine species of amphibians. Ecology, 46, 261–269. https://doi.org/10.2307/1936329
Schwarzkopf, L. y Alford, R. A. (1996). Desiccation and shelter-site use in a tropical amphibian: comparing toads with physical models. Functional Ecology, 10, 193–200. https://doi.org/10.2307/2389843
Seebacher, F. y Alford, R. A. (2002). Shelter microhabitats determine body temperature and dehydration rates of a terrestrial amphibian (Bufo marinus). Journal of Herpetology, 36, 69–75. https://doi.org/10.2307/1565804
Shoemaker, V. y Nagy, K. A. (1977). Osmoregulation in amphibians and reptiles. Annual Review of Physiology, 39, 449–471. https://doi.org/10.1146/annurev.ph.39.030177.002313
Tejedo, M., Duarte, H., Gutiérrez, L., Beltrán, J., Katzenberger, M., Marangoni, F. et al. (2012). El estudio de las tolerancias térmicas para el examen de hipótesis biogeográficas y de la vulnerabilidad de los organismos ante el calentamiento global. Ejemplos en anfibios. Boletín de la Asociación Herpetológica Española, 23, 2–27.
Titon, Jr. B., Navas, C. A., Jim, J. y Gomes, F. R. (2010). Water balance and locomotor performance in three species of neotropical toads that differ in geographical distribution. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular y Integrative Physiology, 156, 129–135. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2010.01.009
Toledo, R. C. y Jared, C. (1993). Cutaneous adaptations to water balance in amphibians. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 105, 593–608. https://doi.org/10.1016/0300-9629(93)90259-7
Tracy, C. Betts, G. Tracy, C. R. y Keith, C. (2007). Plaster Models to Measure Operative Temperature and Evaporative Water Loss of Amphibians. Journal of Herpetology, 41, 597–603. https://doi.org/10.1670/07-006.1
Vitt, L. J. y Caldwell, J. P. (2014). Tetrapod relationships and evolutionary systematics. En L. J. Vitt, y J. P. Caldwell (Eds.), Herpetology: an introductory Biology of amphibians and reptiles (pp. 5–14). Oklahoma: Elsevier Inc.
Withers, P. C. (1995). Evaporative water loss and colour change in the Australian desert tree frog Litoria rubella (Amphibia: Hylidae). Records-Western Australian Museum, 17, 277–282.
Yorio, T. y Bentley, P. J. (1977). Asymmetrical permeability of the integument of tree frogs (Hylidae). The Journal of Experimental Biology, 67, 197–204. https://doi.org/10.1242/jeb.67.1.197
Young, J. E. (2006). Ecological and chemical correlates of cutaneous resistance to evaporative water loss for Hylid frogs from the wet-dry tropics of Australia (Tesis doctoral). School of Science, Charles Darwin University, Australia.
Young, J. E., Tracy, C. R., Christian, K. A. y McArthur, L. J. (2006). Rates of cutaneous evaporative water loss of native Fijian frogs. Copeia, 1, 83–88. https://doi.org/10.1643/0045-8511(2006)006[0083:ROCEWL]2.0.CO;2
Zar, J. H. (1999). Biostatistical analysis. 4th Edition. Englewood Cliffs, New Jersey: Prentice-Hall, Inc.
Zippel, K. C. y Mendelson, J. R. (2008). The amphibian extinction crisis: a call to action. Herpetological Review, 39, 23–29.
